Astuce PerkinElmer

R : Elles couvrent deux applications principales : 1. Pipettes conventionnelles, compatibles avec la gamme complète de micropipettes PerkinElmer, couvrant une plage de volumes de 10 μL à 1 000 μL. Les buses coniques correspondent précisément aux pipettes, avec une plage d'erreur inférieure ou égale à ± 1 %. 2. Plateformes automatisées et instruments professionnels, tels que les systèmes de pipetage automatisés comme Janus™ MiniTrak, PlateTrak™ et Evolution P3, ainsi que des équipements d'analyse de précision comme les spectromètres d'absorption atomique (AA). Certains modèles sont également compatibles avec les têtes de pipettes comme la MDT-96P50 et la MDT-384-30μL.

R : Les plages de volumes couvrent 30 μL, 10 μL-1 000 μL et incluent des modèles conventionnels transparents et des modèles avec filtres de protection contre les aérosols. Conditionnées en sachets de 1 000 (par exemple, numéro d'article 02902149) ou en racks de 384 puits (compatibles avec les plaques 384 puits), avec des caisses contenant 5 à 10 racks, ces pointes répondent aux besoins du pipetage manuel et automatisé.

R : Les principaux avantages résident dans la précision et la cohérence : grâce à un contrôle qualité rigoureux, les valeurs CV d'un lot-à-de lots sont inférieures à 2 %. La buse conique s'adapte parfaitement à la pipette, garantissant une erreur de pipetage inférieure ou égale à ± 1 %. Fabriquées en polypropylène de haute-pureté, ces pointes résistent aux produits chimiques tels que les acides forts et les solvants organiques, ce qui les rend adaptées aux applications exigeantes telles que l'analyse de traces.

R : Les modèles pré-stérilisés sont soumis à une certification rigoureuse en salle blanche, garantissant qu'ils sont exempts de DNase, de RNase, de pyrogènes et d'inhibiteurs de PCR. Les niveaux d'endotoxines répondent aux exigences réglementaires, ce qui leur permet d'être utilisés directement dans des expériences sensibles à la contamination-telles que la culture cellulaire, l'extraction d'acide nucléique et les diagnostics moléculaires sans nécessiter de stérilisation supplémentaire.

R : Conçus spécifiquement pour les plates-formes automatisées, ils sont conditionnés dans des racks standards ANSI/SLAS-et sont compatibles avec une préhension robotique précise. Certains modèles présentent une optimisation de surface pour réduire l'entraînement de liquide, et leur résistance structurelle résiste à la fréquence élevée des opérations de prélèvement-et-de placement et de pipetage utilisées par les équipements automatisés.

R : Trois points clés doivent être prioritaires : 1. La pointe est-elle correctement installée ? Assurez-vous qu'il s'insère parfaitement dans le connecteur de la pipette, sans aucun jeu.. 2. Vérifiez l'usure de la pointe. L'usure peut affecter directement la précision, alors remplacez rapidement la pointe d'origine.. 3. Vérifiez le joint de la pipette. Si des fuites sont détectées, remplacez le joint de la pipette et recalibrez.

R : Une méthode de « nettoyage progressif » est recommandée : immédiatement après l'injection, rincer à l'acétone 5 à 8 fois, suivi de 3 rinçages au méthanol pour éliminer tout résidu d'acétone. Si des résidus solidifiés tels que de la graisse sont présents, tremper dans du dichlorométhane pendant 30 minutes, puis rincer sous pression et enfin purger avec de l'azote pour éviter que les résidus n'affectent les expériences ultérieures.